Evaluación de la actividad antimicrobiana de semillas de Leucaena esculenta y L. leucocephala de la localidad de Tlayacapan, Morelos (México).

María de los Ángeles Mora Villa

doi:10.18387/polibotanica.52.12

María de los Ángeles Mora Villa Laboratorio de Bioactividad de Productos Naturales.UBIPRO, Facultad de Estudios Superiores-Iztacala, Universidad Nacional Autónoma de México

DOI: https://doi.org/10.18387/polibotanica.52.12

Palabras clave: Actividad antimicrobiana, Leucaena leucocephala, L. esculenta, plantas medicinales, Tlayacapan, Morelos.

Resumen

Leucaena esculenta y L. leucocephala (Fabaceae) son especies comúnmente conocidas en México como “guajes” y usadas como recursos alimenticio y medicinal para aliviar diferentes enfermedades infecciosas. El objetivo del presente estudio fue la determinación de la actividad antimicrobiana de semillas de L. esculenta y L. leucocephala de la comunidad de Tlayacapan Morelos. Los extractos fueron obtenidos mediante la técnica de maceración y reducidos por destilación al vacío. La actividad antimicrobiana, fue determinada cualitativa y cuantitativamente en 20 cepas bacterianas, 3 cepas levaduriformes y 4 cepas de hongos miceliados. En las pruebas cualitativas, se encontró actividad antimicrobiana en 6 cepas bacterianas, 1 cepa de hongos levaduriformes y 4 de hongos miceliados. Mediante la técnica de microdilución en caldo, Escherichia coli CUSI mostró valores de CMI de 2000 y 3000 μg/mL para L. leucocephala y L. esculenta respectivamente y para Staphylococcus aureus CUSI, CMI = 4000 y 2000 μg/mL para L. leucocephala y L. esculenta respectivamente, ambas cepas sensibles a los extractos metanólicos. Los valores de CBM para las cinéticas de muerte (6000 μg/mL para L. leucocephala y 4000 μg/mL para L. esculenta) tuvieron efecto significativo en las primeras horas de tratamiento. Por su parte, C. glabrata fue susceptible a los extractos metanólicos con valores de CFM de 4000 μg/mL (L. leucocephala) y 6000 μg/mL (L. esculenta). Mediante la técnica de inhibición del crecimiento radial, fue reportado, que los valores más bajos de CF₅₀corresponden a los extractos acetónicos de semillas (L. lecucocephala= 2.28 mg/mL y L. esculenta = 2.72 mg/mL) teniendo efecto significativo contra cepas de Trichophyton mentagrophytes y Aspergillus niger respectivamente. En las pruebas cualitativas para la determinación de metabolitos secundarios se encontró la presencia de alcaloides, triterpenos, monoterpenos, esteroides, saponinas y compuestos fenólicos, los cuales reportan potencial antimicrobiano. Los extractos metanólicos y acetónicos de semillas de ambos guajes presentaron actividad biológica significativa sobre diferentes cepas de bacterias y hongos, validando así, el uso medicinal de este recurso por parte de la comunidad de Tlayacapan.

Citas

Abu, M., Yin, H., Isha, A., & Armania, N. (2016). Antioxidant, antimicrobial and cytotoxic potential of condensed tannins from Leucaena leucocephala hybrid-Rendang. Food Science and Human Wellness, 5(2), 65–75. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.fshw.2016.02.001
Aderibigbe, S. A., Adentunji, O. A., & Odeniyi, M. A. (2011). Antimicrobial and pharmaceutical properties of the seed oil of Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit. (Leguminosae). African Journal of Biomedical Reserch, 14(1), 63–68. https://cutt.ly/Pl2ii3c
Ávalos, G. A., & Pérez, E. C. (2009). Metabolismo secundario de planta. Serie Fisiología Vegetal., 2(3), 119–145. https://cutt.ly/ll2iLbA
Balouiri, M., Sadiki, M., & Ibnsouda, S. K. (2016). Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. Journal of Pharmaceutical Analysis, 6(2), 71–79. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.jpha.2015.11.005
Bhalla, R., Narasimhan, K., & Swarup, S. (2005). Metabolomics and its role in understanding cellular responses in plants. Plant Cell Rep, 24, 562–571. https://doi.org/https://doi.org/10.1007/s00299-005-0054-9
Brodie, R., & Simonyi, C. (2020). Excel (19.0).
Bulugahapitiya, V. P. (2018). Plants Based Natural products Extraction , Isolation and Phytochemical screening (Issue April). Indika Graphics. https://cutt.ly/rl0CQbr
Cantón, E., & Pemán, J. (1999). Curvas de letalidad en antifúngicos. Revista Iberoamericana de Micología, 16, 82–85. https://cutt.ly/Fl2pWi9
CLSI. (1998). Methods for Determining Bactericidal Activity of Antimicrobial Agents. Approved Guideline. CLSI document M26-A.
CLSI. (2004). Method for Antifungal Disk Diffusion Susceptibility Testing of Yeasts, Approved Guideline. CLSI document M44-A. CLSI.
CLSI. (2010). Method for Antifungal Disk Diffusion Susceptibility Testing of Nondermatophyte Filamentous Fungi, Approved guideline. CLSI document M51-A.
CLSI. (2012a). Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria that Grow Aerobically, Approved Standard. (9th ed.). CLSI document M07-A9.
CLSI. (2012b). Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests, Approved Standard (7th ed.). CLSI document M02-A11.
Coloma, J. M. (2009). Evaluación in vitro de la actividad antifúngica de los alcaloides del chocho (Lupinus mutabilis Sweet) [Escuela Superior Politécnica Chimborazo]. https://cutt.ly/Dl2kkK0
CONABIO y UAEM. (2006). La Diversidad Biológica en Morelos: Estudio del Estado. (T. Contreras, J. Boyás, & F. Jaramillo (eds.)). https://cutt.ly/dl0z2uj
CONEVAL. (2015). Diagnóstivo municipal 2015. Tlayacapan. https://cutt.ly/jl0xR2e
Curiel, E. ., Hernández, M., Ramírez, J., Rivas, A., Ortiz, M., Serrano, R., & Hernández, T. (2017). Antimicrobial Activity of Essential Oil of Zingiber officinale Roscoe (Zingiberaceae). American Journal of Plant Sciences, 8, 511–1524. https://doi.org/10.4236/ajps.2017.87104
D’Mello, J. P. (1992). Chemical constraints to the use of tropical legumes in animal nutrition. Animal Feed Science and Technology, 38(3), 237–261. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/0377-8401(92)90105-F
Dago, Y., Milian, J., Calzadilla, K., Redonet, M., López, Y., & Hernández, L. (2020). Uso potencial de Leucaena leucocephala Lam. (Leucaena) presente en sistemas agroforestales de Pinar del Río. Revista Cubana de Ciencias Forestales, 8(1), 154–162. http://scielo.sld.cu/pdf/cfp/v8n1/en_2310-3469-cfp-8-01-154.pdf
Domínguez, X. (1985). Métodos de Investigación Fitoquímica (3a ed.). Limusa.
Errecalde, J. O. (2004). Mecanismo de acción de antibióticos. Uso de Antimicrobianos en Animales de Consumo Humano. 67. https://doi.org/92-5-305150-7
Gómez, P. (2018). Productos naturales: Metabolitos secundarios y aceites esenciales. UNIAGRARIA. https://cutt.ly/7lueIzL
Hammer, Ø., Harper, D., & Ryan, P. . (2020). PAST (4.03).
INEGI. (2005). INEGI. Marco Geodésico Municipal (2005). Información Topográfica Digital Escala 1:250 000. Serie III. (3.1).
Komatsu, K. (2021). PaintToolSAI (Ver.1.Ink.).
Marcano, D., & Hasegawa, M. (2002). Fitoquímica orgánica. Universidad Central de Venezuela.
Mathur, P., Singh, A., Vivek, S., Singh, D., & Yati, M. (2013). Antimicrobial activity of indigenous wildly growing plants: potential source of green antibiotics. African Journal of Biomedical Reserch, 7(29), 3807–3815. https://cutt.ly/Ul0u6qB
Mulaudzi, T. M. (2015). Bioactivity and chromatographic profiles of the selected medicinal plants against Candida albicans. University of Veda.
Murray, P., Rosenthal, K., & Pfaller, M. (2017). Microbiología médica (8th Ed.). Elsevier.
Nwe, W., Mar, N., Nyunt, W., Myint, W., Hla, S., & Myint, K. (2001). Antibacterial Activity of Selected Myanmar Medicinal Plants. Journal Myanmar Academic Technology, 1, 75–88. https://cutt.ly/Yl0wSrb
Orozco, J., Lira, R., Jiménez, M., Ávila, J. G., Serrano, R., & Hernández, T. (2020). Plantas medicinales de Oaxaca, México: Etnobotánica y actividad antibacteriana. Boletín Latinoamericano y Del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas, 19(2), 221–235. https://doi.org/https://doi.org/10.37360/blacpma.20.19.2.14
Osuna, L., Tapia, M. E., & Aguilar, A. (2005). Plantas medicinales de la medicina tradicional mexicana para tratar afecciones gastrointestinales: estudio etnobotánico, fitoquímico y farmacológico. Universitat de Barcelona. https://cutt.ly/Ol1trl0
Peralta, I., Gómez, A., Romero, P. A., & Reyes, A. (2017). Uso antropocéntrico del guaje Leucaena esculenta (Moc. & Sessé Ex. DC.) Benth,en dos comunidades de la mixteca baja oaxaqueña, México. Polibotánica., 43, 1–16. http://www.scielo.org.mx/pdf/polib/n43/1405-2768-polib-43-00349.pdf
Quevedo, Y. (2015). Plantas medicinales: un estudio de caso etnobotánico en la localidad de Ocotepec, municipio de Cuernavaca, Morelos. In Biblioteca.Upaep.Mx. http://biblioteca.upaep.mx/pdf/L_PS_Flores_Diaz_MC.pdf
Reda, S. M., ElSouda, S. S., Hanan, A. ., Moharam, M. ., & Shaker, K. (2015). Antioxidant, antimicrobial activities of flavonoids glycoside from Leucaena leucocephala leaves. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 5(6), 138–147. https://doi.org/10.7324 / JAPS.2015.50623
Ringuelet, J. A., & Viña, S. (2013). Productos naturales vegetales. Editorial Universidad de La Plata. https://cutt.ly/sl2vJ33
Román, D. (2015). Uso potencial de recursos vegetales en el municipio de Tlayacapan, Morelos. Instituto Politécnico Nacional.
Román, N., García, M., Castillo, A. M., Sahagún, J., & Jiménez, A. (2014). Componentes nutricionales y antioxidantes de dos especies de guaje (Leucaena spp.): un recurso ancestral subutilizado. Revista Chapingo. Serie Horticultura, 20(2), 157–170. https://doi.org/https://doi.org/10.5154/r.rchsh.2013.07.023
Ross, I., & Gentleman, R. (2019). RStudio Team (3.6.1).
Savita, S., & Preeti, S. (2015). Evaluation of antibacterial and antimutagenic potential of Acokanthera oppositifolia and Leucaena leucocephala. American Journal of Pharmacy and Health Research, 2015(3), 1. https://cutt.ly/Gl0uuH1
Scrase, R. (1995). Cultivating mushrooms, from pure culture to spawn production. Mycologist., 9(2), 53–56. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/S0269-915X(09)80207-3
Sepúlveda, J., Torres, J., Sandoval, C., Martínez, J., & Chan, J. (2018). La importancia de los metabolitos secundarios en el control de nematodos gastrointstinales en ovinos con énfasis en Yucatán, México. Journal of the Selva Andina Animal Science, 5(2), 79–95. https://cutt.ly/Ql1k1Re
Shelton, H., Kerven, G. L., & Dalzell, S. A. (2019). An update on Leucaena toxicity: Is inoculation with Synergistes jonesii necessary? Tropical Grasslands-Forrajes Tropicales, 7(2), 146–153. https://doi.org/DOI: https://doi.org/10.17138/tgft(7)146-153
Waizel, J. (2006). Las plantas en la historia de la medicina, breve visión histórica. In J. Waizel (Ed.), Las plantas medicinales y las ciencias. Una visión multidisciplinaria. (pp. 181–201). Instituto Politécnico Nacional.
Yik, C., Ling, E., Ling, Y., Lim, Y., Stanslas, J., & Goh, J. (2011). . Assessment of phytochemical content polyphenolic composition antioxidant and antibacterial activities of Leguminosae medicinal plants in Peninsular Malaysia. BMC Complementary and Alternative Medicine, 11(12), 1472. https://doi.org/10.1186 / 1472-6882-11-12
Zárate, S. (1987). Guaje blanco. Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit. Pytologia, 63(4), 304–306. https://cutt.ly/il1hWOH
Zárate, S. (1994). Revisión del género Leucaena en México. Anales Del Instituto de Biología, 62(2), 83–162. http://revistas.unam.mx/index.php/bot/article/view/1863