Compuestos orgánicos en la propagación <i>in vitro</i> de <i>Epidendrum falcatum</i> Lindl orquídea endémica de México

Tomasita Santiago-Jerónimo; Víctor Manuel Chávez-Ávila; Santos Carballar-Hernández; Rigoberto González-Cubas

doi:10.18387/polibotanica.57.9

Tomasita Santiago-Jerónimo 1Tecnológico Nacional de México, Campus San Miguel el Grande
Víctor Manuel Chávez-Ávila
Santos Carballar-Hernández
Rigoberto González-Cubas

DOI: https://doi.org/10.18387/polibotanica.57.9

Palabras clave: Micropropagación, crecimiento, conservación, orquídeas

Resumen

Epidendrum falcatum Lindl es una orquídea endémica de México, con una distribución discontinua en poblaciones silvestres que crecen sobre rocas calizas. Las actividades antropogénicas y la demanda de coleccionistas han provocado una disminución en las poblaciones silvestres de esta especie. El objetivo de este trabajo fue conocer el efecto de dos compuestos orgánicos sobre la propagación in vitro de E. falcatum. Semillas provenientes de una cápsula indehiscente se cultivaron en medio Murashige y Skoog (MS) modificado a 50 % de los macronutrientes y adicionado con 10, 20 y 30 mL L^-1 y g L^-1 de agua de coco o pulpa de plátano. Los compuestos orgánicos promovieron la germinación de E. falcatum; el mayor porcentaje de germinación se obtuvo con agua de coco a 10 %. El control presentó mayor número de hojas. Sin embargo, los tratamientos que contenían plátano estimularon significativamente (p ≤ 0.01) la diferenciación del sistema radicular y de estructuras aéreas. Este estudio representa un método biotecnológico exitoso de propagación in vitro para la obtención de ejemplares de E. falcatum y así contrarrestar la explotación de las poblaciones silvestres.

Citas

Aktar, S., Nasiruddin, K. M., & Hossain, K. (2008). Effects of different media and organic additives interaction on in vitro regeneration of Dendrobium Orchid. Journal of Agriculture and Rural Development, 6, 69-74. https://doi.org/10.3329/jard.v6i1.1659
Arditti, J. (1992). Fundamentals of orchid biology. Wiley-Interscience. New York.https://polibotanica.mx/index.php/polibotanica/submission/wizard/2?submissionId=1098#disciplines
Arditti, J., & Ernest, R. (1993). Micropropagation of orchids. Wiley-Interscience Publication. New York.
Arditti, J. (2010). Plenary Presentation: History of orchid propagation. University of bCalifornia. Molecular Biology Biotechnology, 18, 171-174. https://www.researchgate.net/publication/267228544_Plenary_Presentation_History_of_orchid_propagation
Arias-Hernández, M. L., Santibáñez, S. R., Rincón, R. R., Ayota-Talavera, T., & Gutiérrez-Miceli, F. A. (2006). Efecto de agua de coco y homogeneizado de jitomate y plátano sobre el crecimiento de la orquídea Guarianthe skinnerii, cultivada in vitro. Ciencia y Tecnológia en la Frontera, 4 (3), 23-28.
Arzate-Fernández A. M., Rosas-Chávez R, Norman-Mondragón T. H., Corona-Rodríguez M. C. & Piña-Escutia J. L. (2023). Multiplicación in vitro de Phalaenopsis sp. Usando reguladores de crecimiento vegetal, aguamiel y pulque (complejjos orgánicos). Tropical and Subtropical Agroecosystems, 19, 1-10. http://doi.org/10.56369/tsaes.3981
Ávila, I. D., & Salgado, R. G. (2006). Propagación y mantenimiento in vitro de orquídeas mexicanas para colaborar en su conservación. Biológicas, 8, 138-149. https://www.biologicas.umich.mx/index.php?journal=biologicas&page=article&op=view&path%5B%5D=9
Chen, Y., Goodale, U. M., Fan, X. L., & Gao, J. Y. (2014). Asymbiotic seed germination and in vitro seedling development of Paphiopedilum spicerianum: An orchid with an extremely small population in China. Global Ecology and Conservation, 3, 367-378. https://doi.org/10.1016/j.gecco.2015.01.002
Damon, A., Guerrero, E. A., Rivera, L., & Nikolaeva, V. (2004). Germinación in vitro de semillas inmaduras de tres especies de orquídeas de la región del Soconusco, Chiapas, México. Revista Chapingo serie Horticultura, 10, 195-203. https://doi.org/10.5154/r.rchsh.2002.05.025
David, D., Jawan, R., Marbawi, H., & Gansau, J. A. (2015). Organic Additives Improves the in Vitro Growth of Native Orchid Vanda helvola Blume. Notulae Scientia Biologicae, 7(2),192-197. https://doi.org/10.15835/nsb729546
Edy S. W., & Sucipto, H. (2020). Organic Compounds: Contents and Their Role in Improving Seed Germination and Protocorm Development in Orchids. International Journal of Agronomy, 2020, 1-12. https://doi.org/10.1155/2020/2795108
Flores-Escobar, G., Legaria-Solano, J. P., Gil-Vásquez, I., & Colinas-León, M. T. (2008). Propagación in vitro de Oncidium stramineum lindl. una orquídea amenazada y endémica de México. Revista Chapingo Serie Horticultura, 14, 347-353. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=60914316
Flores-Escobar, G., Gil-Vásquez, I., Colinas-León, M. T., & Mata-Rosas, M. (2011). Propagación in vitro de la orquídea Brassia verrucosa Bateman ex. Lindl. Revista Chapingo Serie Horticultura, 17, 5-8. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=60920046001
Hágsater, E., García-Cruz, J., Jiménez, R., & Sánchez, L. M. (1999). Estudio taxonómico-florístico de la familia Orchidaceae en el Bajío: tribus Epidendrae y Maxillariae. Instituto Chinoin, México.
Hágsater, E., & Soto-Arenas M. A. (2005). Epidendrum L. En: Genera Orchidacearum, A.M. Pridgeon, P. J. Cribb, M. W. Chase y F.N. Rasmussen (eds.). Oxford: Oxford University Press.
Islam, M. O., Akter, M., & Prodhan, A. K. M. A. (2011). Effect of potato extract on in vitro seed germination and seedling growth of local Vanda roxburgii orchid. Journal Of The Bangladesh Agricultural University, 9(2), 211–215. https://pdfs.semanticscholar.org/acd0/5c7bf8545f454d688863dc860872b16cc924.pdf
Kaewkhiev, P., & Kaewduangta, W. (2010). Natural additives modification médium: Growth of Rhynchostylis gigantean by tissue culture technique. Asian Journal of Plant Sciences, 9(8), 498-501. https://doi.org/10.3923/ajps.2010.498.501
Kaur, S., & Bhutani, K. K. (2012). Organic growth supplement stimulants for in vitro multiplication of Cymbidium pendulum (Roxb.) Sw. Horticultural Science, 39, 47-52. https://doi.org/10.17221/52/2011-HORTSCI
Lo, SF., Nalawade, S.M., Kuo, CL., Chen, CL., Tsay, HS. (2004). Asymbiotic germination of immature seeds, plantlet development and ex vitro establishment of plants of Dendrobium tosaense makino-A medicinally improrant orchid. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant volume. 40: 528–535. https://doi.org/10.1079/IVP2004571
McKendrick, S. (2000). Manual para la germinación de orquídeas in vitro. Ceiba Foundation for Tropical Conservation.
Minea, M., Piluek, C., Menakanit, A., & Tantiwiwat, S. (2004). A study on seed germination and seedling development of Spathoglottis Bl. Orchids. Kasetsart Journal Natural Science, 38, 141-156. https://li01.tci-thaijo.org/index.php/anres/article/view/242943
Moreno, M. D., & Menchaca, G.R. (2007). Efecto de los compuestos orgánicos en la propagación in vitro de Stanhopea tigrina Bateman (Orchidaceae). Foresta veracruzana, 9, 27-32. https://www.redalyc.org/pdf/497/49790204.pdf
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Physiologia Plantarum, 15, 473–497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Ossenbach, C., Arce, J., & Warner, J. (2007). Almacenamiento de semillas de diferentes especies de orquídeas para su conservación en un banco de germoplasma. Tierra Tropical, 3, 85-97.
Ruiz, B. C., Laguna, C. A., Iglesias, A. L.G., Damon, A., Marín, N. J., Azpíroz R. H., & Moreno. M. (2008). Germinación in vitro de semillas de Encyclia adenocaula. Revista Internacional de Botánica experimental, 77, 203-215. https://www.redalyc.org/pdf/2631/263149504020.pdf
Salazar, G. (2018). Diversidad biológica e inventarios. http://www.scielo.org.co/pdf/entra/v15n2/1900-3803-entra-15-02-264.pdf
Sandoval, M. A., Chiavazza, P., Faggio, A., & Contessa, C. (2014). Effect of coconut water and growth regulator supplements on in vitro propagation of Corylus avellana L. Scientia Horticulturae, 171, 91–94. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2014.03.052
Solano-Gómez, R., Bello-López, R., & Vásquez-Martínez, A. (2007). Listado de las orquídeas de la región de Juquila, Oaxaca, México. Naturaleza y Desarrollo, 5, 5-14. https://www.researchgate.net/publication/267689428_Listado_de_las_orquideas_de_la_region_de_Juquila_Oaxaca_Mexico
Solano-Gómez, R., Cruz, G., Martínez A., & Lagunes L. (2010). Plantas utilizadas en la celebración de semana santa en Zaachila, Oaxaca, México. Polibotánica, 29, 263-279. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=62112471012
Soto-Arenas, M. A., & Salazar, G. A. (2004). Orquídeas. En: Biodiversidad de Oaxaca. A. J. García-Mendoza, M. J. Ordoñez y M. Briones-Salas (eds.). Instituto de Biología, UNAM-Fondo Oaxaqueño para la conservación de la Naturaleza-World wildlife Fund, México.
Steel, R. G., & Torrie, J. H. (1988). Bioestadística: principios y procedimientos. McGraw-Hill, México. D.F.
Teixeira da Silva, J. A., Tsavkelova, E. A., Ng, T. B., Parthibhan, S., Dobránszki, J., Cardoso, J. C., Rao, M. V., & Zeng, S. (2015). Asymbiotic in vitro seed propagation of Dendrobium. Plant Cell Reports, 34,1685-1706. https://doi.org/10.1007/s00299-015-1829-2
Utami, W. E. S., Hariyanto, S., & Manuhara, Y. S. W. (2017). In vitro propagation of the endangered medicinal orchid, Dendrobium lasianthera J.J.Sm through mature seed culture. Asian Pac J Trop Biomed, 7(5), 406–410. https://doi.org/10.1016/j.apjtb.2017.01.011
Yam. W. T., & Arditti J. (2009). History of orchid propagation: a mirror of the history of biotechnology. Plant Biotechnology Reports, 3, 1–56. https://doi.org/10.1007/s11816-008-0066-3
Yong, J. W. H., Ge, L., Ng, Y. F., Tan, N. (2009). The Chemical Composition and Biological Properties of Coconut (Cocos nucifera L.) Water. Molecules, 14, 5144-5164. https://doi.org/10.3390/molecules14125144