Flavonoides, antocianinas y macronutrientes totales en productos artesanales de zarzamora (<i>Rubus</i> sp.) de Atecáxil, Veracruz, México

FLAVONOIDES, ANTOCIANINAS Y MACRONUTRIENTES TOTALES EN PRODUCTOS DE ZARZAMORA (Rubus sp)

  • Neil Abel Felipe Mendoza Facultad de Biología, Universidad Veracruzana
  • María de Jesús Martínez Hernández Facultad de Ciencias Agrícolas, Universidad Veracruzana
  • María del Carmen Ramírez Benítez Facultad de Biología, Universidad Veracruzana
  • Karla Daniela Hernández González Facultad de Biología, Universidad Veracruzana
  • Jorge Molina Torres Laboratorio de Fitobioquímica, Departamento de Biotecnología y Bioquímica, CINVESTAV-IPN
  • Vianey del Rocio Torres-Pelayo Facultad de Biología, Universidad Veracruzana
  • Mayvi Alvarado Olivarez Instituto de Nueroetologia, Universidad Veracruzana
DOI: https://doi.org/10.18387/polibotanica.56.10
Palabras clave: Functional foods, Craft products, Rubus sp., Antioxidants, Phytochemical.

Resumen

FLAVONOIDES, ANTOCIANINAS Y MACRONUTRIENTES TOTALES EN PRODUCTOS ARTESANALES DE ZARZAMORA (Rubus sp) DE ATECÁXIL, VERACRUZ, MÉXICO.

El fruto de zarzamora (Rubus sp) es considerado alto en fibra, vitaminas, minerales y antioxidantes, estos componentes se destacan por sus propiedades terapéuticas. Sin embargo, es importante determinar si estos antioxidantes aún se conservan en alimentos o frutas procesadas; y brindar al consumidor información nutricional de este producto, el cual han tenido una gran demanda en la región centro del Estado de Veracruz. El objetivo principal fue determinar los contenidos totales de flavonoides y antocianinas en la fruta, mermelada y licor de mora artesanal; y la cantidad de carbohidratos, lípidos y proteínas totales contenidos en los productos de zarzamora elaborados artesanalmente con técnicas no convencionales en Atecaxil, Veracruz, México. Se realizó un tamiz fitoquímico y cromatografía en capa fina de alta resolución en frutos, licor artesanal y mermelada de zarzamora. Los flavonoides y antocianinas totales se cuantificaron por espectrofotometría. En el fruto y en ambos productos, hubo mayor presencia de alcaloides y flavonoides. Se observó en la placa cromatográfica, bandas de color púrpura a púrpura claro, que son características de las antocianinas. Durante los tres años de producción, hay un mayor número de flavonoides en la mermelada (43,6mg) que en el licor (16,0mg). Las antocianinas se encontraron en mayor cantidad en la mermelada de mora (59,3mg) que en el licor de mora (23,6mg). En ambas productos artesanales, se conservan los flavonoides y antocianinas totales. El licor artisanal se encontró un valor energético de 82,48 kJ/19,7 kcal por 15 mL, 3,5 g de carbohidratos, 0,1 g de lípidos y 0,1 g de proteína total, teniendo 33 porciones por envase. En la mermelada de mora se encontró un valor energético de 110.11kJ/26.3 kcal por 10 g, 6g de carbohidratos, 0.1 g de lípidos y 0.1 g de proteína total, teniendo 34 porciones cada envase. Estos productos artesanales podrían competir en el mercado; debido que aún se preservan los flavonoides y antocianinas, que podría proporcionar información importante al consumidor.

Citas

Aguilera-Ortíz, M., Reza-Vargas, M. C., Chew-Madinaveitia, R. G., & Meza-Velázquez J. A. (2011). Propiedades funcionales de las antocianinas. Revista de Ciencias Biológicas y de la Salud, 13(2),16-22.
Astrid, G. G. (2008). Las antocianinas como colorantes naturales y compuestos bioactivos: revisión. Acta Biológica Colombiana, 13(3), 27-36.
Díaz-Aranda, A.B., (2001). Fábrica de mermelada. Descripción del producto. Anejo 1. 2, 27-47.
Badui D. S. (2006). Química de los Alimentos. Editorial Pearson Educación, México.
Bradshaw, L.J. (1966). Introducction to molecular biological techniques. Prentice-Hall. New York.
Bligh E., & Dyer W. (1959). Can J Biochem and Physiol. 37, 1-911.
Boulton, R. (2001). The copigmentatión of anthocyanins and its role in the colour of red wine: A critical review. American Journal of Enology and Viticulture, 52, 67-85.
Borrego-Corchado, C. (2018). Evolución de compuestos de interés biológico en moras a lo largo de la maduración del fruto. Máster en Agroalimentación, Facultad de Ciencias por la Universidad de Cádiz, Argentina.
Bunea, A., Rugina, D. O., Pintea, A. M., Sconta, Z., Bunea C. I., & Socaciu C. (2011). Comparative polyphenolic content and antioxidant activities of some wild and cultivated blueberries from Romania. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 39(2),70-76.
Cerón, A., Osorio, O., & Hurtado, A. (2012). Identificación de ácidos grasos contenidos en los aceites extraídos a partir de semillas de tres diferentes especies de frutas. Acta Agronómica, 61(2), 126-132.
Coria-Muñoz, L., Maihua, R. E., Peralta, F. L., Tereschuk, M. L., González M., & Albarracín P. (2009). Análisis de antocianinas en arándanos del NOA (Vaccinium corymbosum L.). Journal of the Amencan Society for Horticultural Science, 14(2), 315-319.
Cuevas-Rodríguez, E. O., Dia, V. P., Yousef, G. G., García-Saucedo, P. A., López-Medina, J., Paredes-López, O., Gonzalez de Mejia E., & Lila M. A. (2010). Inhibition of pro-inflammatory responses and antioxidant capacity of mexican blackberry (Rubus spp.) extracts. Journal Agriculture and Food Chemestric, 58(17), 9542–9548.
Deighton, N., Brenan, R., Finn C., & Davies H.V. (2000). Antioxidant propierties of domesticated and wild Rubus species. Journal of the Science of Food and Agriculture, 80, 1307-131.
Di Stefano, R., Cravero M. C., & Gentilini N. (1989). Metodi per lo studio nei polifenoli dei vini. L’enotecnico, 5, 83-90.
Domínguez, A. X. (1979). Métodos de investigación fitoquímica. Ed. Limusa, México.
Durst, R., & Wrolstad, R. E. (2001). Separation and characterization of anthocyanins by HPLC: In: Wrolstad et –al. (eds.) John Wiley and Sons, Handbook of Food Analytical Chemistry, Pigments, Colorants, Flavors, Texture and bioactive Food Components, (pp:33-45). Inc., Hoboken, New York, USA.
Dumitriu, D., Peinado, R.A., Peinado, J., & de Lerma, N.L. (2015). Grape pomace extract improves the in vitro and in vivo antioxidant properties of wines from sun light dried Pedro Ximnez grapes. Journal of Functional Foods, 17, 380–387.
Falcão, L., Falcão, A., Gris E., & Bordignon M. (2008). Spectrophotometric study of the stability of anthocyanins from Cabernet Sauvignon grape skins in a model system. Brazilian Journal of Food Technology, 11(1), 63-69.
Fia, G., Gori, C., Bucalossi, G., Borghini, F., & Zanoni, B. A. (2018). Naturally Occurring Antioxidant Complex from Unripe Grapes: The Case of Sangiovese (v. Vitis vinifera). Antioxidants, 7(2), 27.
Garzón, G. (2008). Las antocianinas como colorantes naturales y compuestos bioactivos: revisión. Acta biol. Colombia, 13(3), 27-36.
Garzón, G. A., Riedl, K. M., & Schwartz, S. J. (2009). Determination of anthocyanins total phenolic content and antioxidant activity in Andes berry (Rubus glaucus Benth). Journal of Food Science, 74, 227-232.
Garrido, G. O. M., & Pozo P. (2013). Fenoles y flavonoides totales y actividad antioxidante de extractos de hojas de Lampaya medicinalis F. Phil. Journal of Pharmacy & Pharmacognosy Research, 1(1), 30-38.
Geleijnse, J. M., & Hollman P. C. H. (2008). Flavonoids and cardiovascular health: which compounds, what mechanisms? The American Journal of Clinical Nutrition, 88, 12–13.
Genova, G., Tosetti, R., & Tonutti, P. (2016). Berry ripening, pre-processing and thermal treatments affect the phenolic composition and antioxidant capacity of grape (Vitis vinifera L.) juice. Journal of the Science of Food and Agriculture, 96(2), 664-71.
Gupta, S., Chauhan, D., Mehla, K., Sood, P., & Nair A. (2010). An overview of nutraceuticals: current scenario. Journal of Basic and Clinical Pharmacy, 1:55–62.
Hogan, S., Zhang, L., Li, J., Zoecklein, B., & Zhou, K. (2009) Antioxidant properties and bioactive components of Norton (Vitis aestivalis) and Cabernet Franc (Vitis vinifera) wine grapes. LWT - Food Science and Technology, 42, 1269–1274.
Ivanova, V., Stefova, M. & Chinnici, F. (2010). Determination of polyphenol contents in Macedonian grapes and wines assessed by standardized spectrophotometric methods. Journal of the Serbian Chemical Society, 75, 45–59.
Jungmin L., Dossett, M., & Chad E. F. (2012). Rubus fruit phenolic research: The good, the bad, and the confusing. Food Chemistry, 130 (4), 785-796.
Kelet, G., & Lederer, W. (1974). Handbook of micromethods for the Biological Sciences. Van NostrandReinhol. New York.
Leyva-Daniel, D. E. (2009). Determinación de antocianinas, fenoles totales y actividad antioxidante en licores y fruto de mora. Universidad Tecnológica de la Mixteca, Huajuapan de León, Oaxaca, México.
Lillo, A., Carvajal-Caiconte, F., Núñez, D., Balboa N., & Alvear-Zamora, M. (2016). Cuantificación espectrofotométrica de compuestos fenólicos y actividad antioxidante en distintos berries nativos del Cono Sur de América. Revista de Investigaciones Agropecuarias, 42(2),168-174.
López-Legarda X., Taramuel-Gallardo A., Arboleda-Echavarría, C., Segura-Sánchez F., Restrepo-Betancur, L. F. (2017). Comparison of methods using sulfuric acid for determination of total sugars. Revista Cubana de Química, 29 (2), 180-198.
Marago, E., Michelozzi, M., Calamai, L., Camangi, F., & Sebastiani, L. (2016). Antioxidant properties, sensory characteristics and volatile compounds profile of apple juices from ancient Tuscany (Italy) apple varieties. European Journal of Horticultural Science, 81 (5), 255–263,
Martínez-Cruz, N. S., Arévalo-Niño, K., Verde-Star, M. J., Rivas-Morales, C., Oranday-Cárdenas, A., Núñez-González M. A., & Morales-Rubio, E. (2011). Antocianinas y actividad antiradicales libres de Rubus adenotrichus Schltdl (zarzamora). Revista Mexicana de Ciencias Farmacéuticas, 42(4), 66-71.
Moreno, Á. M. J., Viloria, M. A., López E. &Douglas B. C. (2002). Estabilidad de antocianinas en jugos pasteurizados de mora (Rubus glaucus Benth). Archivos Latinoamericanos de Nutrición, 52(2), 181-186.
Mertz, C., Cheynier V., Gunata, Z. & Brat, P. (2007). Analysis of phenolic compounds in two blackberry species (Rubus glaucus and Rubus adenotrichus Schltdl) by High-Performance Liquid Chromatography with diode array detection and electrospray ion trap mass spectrometry. Journal Agriculture Food, 55 (21), 8616-8624.
Mustafa, A. M., Angeloni, S., Abouelenein, D., Acquaticci, L., Xiao, J., Sagratini, G., Maggi, F., Vittori, S., & Caprioli, G. A. (2022). New HPLC-MS/MS method for the simultaneous determination of 36 polyphenols in blueberry, strawberry and their commercial products and determination of antioxidant activity. Food Chemistry, 367:130743.
Pantoja-Chamorro, A. L., Hurtado-Benavides, A. M., & Martínez-Correa. H. A. (2017). Evaluación del rendimiento, composición y actividad antioxidante de aceites de semillas de mora (Rubus glaucus) extraído con CO2 supercrítico. Información tecnológica, 28 (1), 35-46.
Roa, B. L. J. (2012). Evaluación de las propiedades bioactivas de Mora (Rubus glaucus) y Agraz (Vaccinium meridionale Swartz), en fresco y durante procesos de transformación. Universidad Nacional de Colombia, Colombia.
Rodríguez-Pérez, M. A., Hernández-Rojas, L. A., Madrigal-Ambriz, L. V., García, D. E., Vázquez-Galindo J., & Velasco-Villalpando S. (2010). Evaluación de antocianinas de la zarzamora (Rubus eubatus) en fruta y en conserva, Guanajuato, Gto., Méx.
Sánchez T.A.F. 2013. Fermentación de Autumn bliss para la elaboración de vino de frambuesa. Tesis Licenciatura en Químico en alimentos. UAEM, México.
Santacruz-Cifuentes, L. A. (2011). Análisis químico de antocianinas en frutos silvestres colombianos. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia.
Sariburun E., Şahin, S., Demir, C., Türkben C., & Uylaşer V. (2010). Phenolic Content and Antioxidant Activity of Raspberry and Blackberry Cultivars. Journal of Food Science, 4, 328-335.
Secretaría de Hacienda y Crédito Público (2015). Panorama de la zarzamora (PDF), en: http://www.financierarural.gob.mx/informacionsectorrural/Panoramas/Ficha%20Zarzamora.pdf
Tapia, V., & Alvarado, R. (2012). Mermelada MORA REGIMEL (What’s). SCW -ETR – 311122 V2, 1-2.
Tomas, M., Toydemir, G., Boyacioglu, D., Hall, R.D., Beekwilder, J. & Capanoglu, E. (2017). Processing black mulberry into jam: effects on antioxidant potential and in vitro bioaccessibility. Journal of the Science of Food and Agriculture, 97(10), 3106-3113.
Tomas, M., Toydemir, G., Boyacioglu, D., Hall, R.D., Beekwilder J. & Capanoglu E. (2015). The effects of juice processing on black mulberry antioxidants. Food Chemestry, 1(186), 277-84.
Tsai, J., Huang H., & Huang T. (2004). Relationship bettween anthocyanin patterns and antioxidant capacity in Mulberry wine during storage. Journal of Food Quality, 27, 497-505.
Wagner, H., & Bladt S. (1996). Plant Drug Analysis. A Thin Layer Chromatography Atlas. Springer Verlag, Berlin.
Wada, L., & Ou, B. (2002). Antioxidant activity and phenolic content of Oregon caneberries. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 50, 3495–3500.
Zafra-Rojas, Q.Y. (2019). Valoración de los subproductos del procesamiento de la Zarzamora (Rubus fruticosus), por su contenido en antioxidants y fibra dietética. Tesis Doctoral, UAEH, Hidalgo, Mex.
Zhishen, J., Mengcheng T., & Jianming, W. (1999). The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chemistry, 64(4), 555-559.
Publicado
2023-07-04
Cómo citar
Felipe Mendoza, N., Martínez Hernández, M., Ramírez Benítez, M., Hernández González, K., Molina Torres, J., Torres-Pelayo, V., & Alvarado Olivarez, M. (2023). Flavonoides, antocianinas y macronutrientes totales en productos artesanales de zarzamora (<i>Rubus</i&gt; sp.) de Atecáxil, Veracruz, México. POLIBOTÁNICA, (56). https://doi.org/10.18387/polibotanica.56.10
Número
Núm. 56 (28): POLIBOTANICA 56
Sección
Artículos

Derechos de autor 2023 POLIBOTÁNICA

Creative Commons License
Esta obra está bajo licencia internacional Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Licencia Creative Commons
Polibotánica por Departamento de Botánica de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas del Instituto Politécnico Nacional se distribuye bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional.